Penilaian Hasil Pemeriksaan Urin dr. R. Wirawan, dr. S. Immanuel, dr. R. Dharma Bagian Patologi Klinik Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia/RSCM, Jakarta Sebelum menilai hasil analisa urin, perlu diketahui tentang proses pembentukan urin. Urin merupakan hasil metabolisme tubuh yang dikeluarkan melalui ginjal. Dari 1200 ml darah yang melalui glomeruli permenit akan terbentuk filtrat 120 ml permenit. Filtrat tersebut akan mengalami reabsorpsi, difusi dan ekskresi oleh tubuli ginjal yang akhirnya terbentuk 1 ml urin permenit. Secara umum dapat dikatakan bahwa pemeriksaan urin selain untuk mengetahui kelainan ginjal dan salurannya juga bertujuan untuk mengetahui kelainan kelainan dipelbagai organ tubuh seperti hati, saluran empedu, pankreas, korteks adrenal, uterus dan lain-lain. FAKTOR-FAKTOR YANG TURUT MEMPENGARUHI SUSUNAN URIN Untuk mendapatkan hasil analisa urin yang baik perlu diperhatikan beberapa faktor antara lain persiapan penderita dan cara pengambilan contoh urin. Beberapa hal perlu diperhatikan dalam persiapan penderita untuk analisa urin misalnya pada pemeriksaan glukosa urin sebaiknya penderita jangan makan zat reduktor seperti vitamin C, karena zat tersebut dapat memberikan hasil positif palsu dengan cara reduksi dan hasil negatif palsu dengan cara enzimatik. Pada pemeriksaan urobilin, urobilinogen dan bilirubin sebaiknya tidak diberikan obat yang memberi warna pada urin, seperti vitamin B2 (riboflavin), pyridium dan lain lain. Pada tes kehamilan dianjurkan agar Susunan urin tidak banyak berbeda dari hari ke hari, tetapi pada pihak lain mungkin banyak berbeda dari waktu ke waktu sepanjang hari, karena itu penting untuk mengambil contoh urin menurut tujuan pemeriksaan. Untuk pemeriksaan urin seperti pemeriksaan protein, glukosa dan sedimen dapat dipergunakan urin sewaktu , ialah urin yang dikeluarkan pada Pada penderita yang sedang haid atau "leucorrhoe" untuk mencegah kontaminasi dianjurkan pengambilan contoh urin dengan cara clean voided specimen yaitu dengan melakukan kateterisasi, punksi suprapubik atau pengambilan urin midstream dimana urin yang pertama keluar tidak ditampung, tapi urin yang keluar kemudian ditampung dan yang terakhir tidak turut ditampung. PEMERIKSAAN MAKROSKOPIK, MIKROSKOPIK DAN KIMIA URIN Dikenal pemeriksaan urin rutin dan lengkap. Yang dimaksud dengan pemeriksaan urin rutin adalah pemeriksaan makroskopik, mikroskopik dan kimia urin yang meliputi pemeriksaan protein dan glukosa. Sedangkan yang dimaksud dengan pemeriksaan urin lengkap adalah pemeriksaan urin rutin yang dilengkapi dengan pemeriksaan benda keton, bilirubin, urobilinogen, darah samar dan nitrit. PEMERIKSAAN MAKROSKOPIK. Yang diperiksa adalah volume. warna, kejernihan, berat jenis, bau dan pH urin. Pengukuran volume urin berguna untuk menafsirkan hasil pemeriksaan kuantitatif atau semi kuantitatif suatu zat dalam urin, dan untuk menentukan kelainan dalam keseimbangan cairan badan. Pengukuran volume urin yang dikerjakan bersama dengan berat jenis urin bermanfaat untuk menentukan gangguan faal ginjal. Banyak sekali faktor yang mempengaruhi volume urin seperti umur, berat badan, jenis kelamin, makanan dan minuman, suhu badan, iklim dan aktivitas orang yang bersangkutan. Rata-rata didaerah tropik volume urin dalam 24 jam antara 800--1300 ml untuk orang dewasa. Bila didapatkan volume urin selama 24 jam. Lebih dari 2000 ml maka keadaan itu disebut poliuri. Poliuri ini mungkin terjadi pada keadaan fisiologik seperti pemasukan cairan yang berlebihan, nervositas, minuman yang mempunyai efek diuretika. Selain itu poliuri dapat pula disebabkan oleh perubahan patologik seperti diabetes mellitus, diabetes insipidus, hipertensi, pengeluaran cairan dari edema. Bila volume urin selama 24 jam 300--750 ml maka keadaan ini dikatakan oliguri. Keadaan ini mungkin didapat pada diarrhea, muntah - muntah, deman edema, nefritis menahun. Anuri adalah suatu keadaan dimana jumlah urin selama 24 jam kurang dari 300 ml. Hal ini mungkin dijumpai pada shock dan kegagalan ginjal. Jumlah urin siang 12 jam dalam keadaan normal 2 sampai 4 kali lebih banyak dari urin malam 12 jam. Bila perbandingan tersebut terbalik disebut nokturia, seperti didapat pada diabetes mellitus. Pemeriksaan terhadap warna urin mempunyai makna karena kadang-kadang dapat menunjukkan kelainan klinik. Warna urin dinyatakan dengan tidak berwarna, kuning muda, kuning, kuning tua, kuning bercampur merah, merah, coklat, hijau, putih susu dan sebagainya. Warna urin dipengaruhi oleh kepekatan urin, obat yang dimakan maupun makanan. Pada umumnya warna ditentukan oleh kepekatan urin, makin banyak diuresa makin muda warna urin itu. Warna normal urin berkisar antara kuning muda dan kuning tua yang disebabkan oleh beberapa macam zat warna seperti urochrom, urobilin dan porphyrin. Bila didapatkan perubahan warna mungkin disebabkan oleh zat warna yang normal ada dalam jumlah besar, seperti urobilin menyebabkan warna coklat. Disamping itu perlu dipertimbangkan kemungkinan adanya zat warna abnormal, seperti hemoglobin yang menyebabkan warna merah dan bilirubin yang menyebabkan warna coklat. Warna urin yang dapat disebabkan oleh jenis makanan atau obat yang diberikan kepada orang sakit seperti obat dirivat fenol yang memberikan warna coklat kehitaman pada urin. Kejernihan dinyatakan dengan salah satu pendapat sepertijernih, agak keruh, keruh atau sangat keruh. Biasanya urin segar pada orang normal jernih. Kekeruhan ringan disebut nubeculayangterdiri dari lendir, sel epitel dan leukosit yang lambat laun mengendap. Dapat pula disebabkan oleh urat amorf, fosfat amorf yang mengendap dan bakteri dari botol penampung. Urin yang telah keruh pada waktu dikeluarkan dapat disebabkan oleh chilus, bakteri, sedimen seperti epitel, leukosit dan eritrosit dalam jumlah banyak. Pemeriksaan berat jenis urin bertalian dengan faal pemekatan ginjal, dapat dilakukan dengan berbagai cara yaitu dengan memakai falling, drop, gravimetri, menggunakan pikno meter, refraktometer dan reagens pita'. Berat jenis urin sewaktu pada orang normal antara 1,003 - 1,030. Berat jenis urin herhubungan erat dengan diuresa, makin besar diuresa makin rendah berat jenisnya dan sebaliknya. Makin pekat urin makin tinggi berat jenisnya, jadi berat jenis bertalian dengan faal pemekat ginjal. Urin sewaktu yang mempunyai berat jenis 1,020 atau lebih, menunjukkan bahwa faal pemekat ginjal baik. Keadaan ini dapat dijumpai pada penderita dengan demam dan dehidrasi. Sedangkan berat jenis urin kurang dari 1,009 dapat disebabkan oleh intake cairan yang berlebihan, hipotermi, alkalosis dan kegagalan ginjal yang menahun. Untuk menilai bau urin dipakai urin segar, yang perlu diperhatikan adalah bau yang abnormal. Bau urin normal disebabkan oleh asam organik yang mudah menguap. Bau yang berlainan dapat disebabkan oleh makanan seperti jengkol, pate, obat-obatan seperti mentol, bau buah-buahan seperti pada ketonuria. Bau amoniak disebabkan perombakan ureum oleh bakteri dan biasanya terjadi pada urin yang dibiarkan tanpa pengawet. Adanya urin yang berbau busuk dari semula dapat berasal dari perombakan protein dalam saluran kemih umpamanya pada karsinoma saluran kemih. Penetapan pH diperlukan pada gangguan keseimbangan asam basa, kerena dapat memberi kesan tentang keadaan dalam badan. pH urin normal berkisar antar 4,5 - 8,0. Selain itu penetapan pH pada infeksi saluran kemih dapat memberi petunjuk ke arah etiologi. Pada infeksi oleh Escherichia coli biasanya urin bereaksi asam, sedangkan pada infeksi dengan kuman Proteus yang dapat merombak ureum menjadi atnoniak akan menyebabkan urin bersifat basa. Dalam pengobatan batu karbonat atau kalsium fosfat urin dipertahankan asam, sedangkan untuk mencegah terbentuknya batu urat atau oksalat pH urin sebaiknya dipertahankan basa. PEMERIKSAAN MIKROSKOPIK Yang dimaksud dengan pemeriksaan mikroskopik urin yaitu pemeriksaan sedimen urin. Ini panting untuk mengetahui adanya kelainan pada ginjal dan saluran kemih serta berat ringannya penyakit. Urin yang dipakai ialah urin sewaktu yang segar atau urin yang dikumpulkan dengan pengawet formalin. Pemeriksaan sedimen dilakukan dengan memakai lensa objektif kecil (10X) yang dinamakan lapangan penglihatan kecil atau LPK. Selain itu dipakai lensa objektif besar (40X) yang dinamakan lapangan penglihatan besar atau LPB. Jumlah unsur sedimen bermakna dilaporkan secara semi kuantitatif, yaitu jumlah rata-rata per LPK untuk silinder dan per LPB untuk eritrosit dan leukosit. Unsur sedimen yang kurang bermakna seperti epitel atau kristal cukup dilaporkan dengan +(ada), ++ (banyak) dan +++ (banyak sekali). Lazimnya unsur sedimen dibagi atas dua golongan yaitu unsur organik dan tak organik. Unsur organik berasal dari sesuatu organ atau jaringan antara lain epitel, eritrosit, leukosit, silinder, potongan jaringan, sperma, bakteri, parasit dan yang tak organik tidak berasal dari sesuatu organ atau jaringan .seperti urat amorf dan kristal Eritrosit atau leukosit didalam sedimen urin mungkin terdapat dalam urin wanita yang haid atau berasal dari saluran kernih. Dalam keadaan normal tidak dijumpai eritrosit dalam sedimen urin, sedangkan leukosit hanya terdapat 0 -- 5/LPK dan pada wanita dapat pula karena kontaminasi dari genitalia. Adanya eritrosit dalam urin disebut hematuria. Hematuria dapat disebabkan oleh perdarahan dalam saluran kemih, seperti infark ginjal, nephrolithiasis, infeksi saluran kemih dan pada penyakit dengan diatesa hemoragik. Terdapatnya leukosit dalam jumlah banyak di urin disebut piuria. Keadaan ini sering dijumpai pada infeksi saluran kemih atau kontaminasi dengan sekret vagina pada penderita dengan fluor lobus. yang berjalan lanjut didapat silinder berbutir dan silinder lilin. atau kristal-kristal lain seperti kristal tirosin, kristal leucin. rti pada infeksi, radang dan batu dalam saluran kemih. Pada sindroma nefrotik benda keton melebihi 40 mg/dl. Pada orang normal tidak didapati glukosa dalam urin. Glukosuria dapat terjadi karena Dalam urin terdiri atas aseton, asam asetoasetat dan asam 13-hidroksi butirat. Karena aseton mudah menguap, maka urin yang diperiksa harus segar. Pemeriksaan benda keton dengan reagens pita ini dapat mendeteksi asam asetoasetat leblih dari 5-10 mg/dl, tetapi cara ini kurang peka. Untuk aseton dan tidak bereaksi dengan asam beta hidroksi butirat. Hasil positif palsu mungkin didapat bila urin mengandung bromsulphthalein, metabolit levodopa dan pengawet 8-hidroksi-quinoline yang berlebihan.
mengurangi minum supaya urin menjadi lebih pekat.
waktu yang tidak ditentukan dengan khusus, kadang kadang bila unsur sedimen tidak ditemukan karena urin sewaktu terlalu encer, maka dianjurkan memakai urin pagi. Urin pagi ialah urin yang pertama kali dikeluarkan pada pagi hari, urin ini baik untuk pemeriksaan berat jenis, protein sedimen dan tes kehamilan.
MAKROSKOPIK, MIKROSKOPIK, URIN
bahaya virus zoonosis
Q fever merupakan penyakit yang bersifat zoonosis yaitu dapat ditularkan dari hewan ke manusia atau sebaliknya. Hewan ternak yang dapat terserang adalah sapi, kambing, domba maupun ternak ruminansia lain. Penularan dapat terjadi melalui kontak langsung dengan hewan terinfeksi, melalui makanan asal ternak terinfeksi seperti daging, susu, produk ternak lainnya maupun oleh partikel debu yang terkontaminasi agen penyebab. Q fever telah menjadi problem kesehatan masyarakat di banyak negara seperti Amerika, Perancis, Inggris, Italia, Jerman, Spanyol, Kanada, Jepang, Australia, Thailand, Taiwan, dan Malaysia.
Bahaya Zoonosis Q Fever
Penyebab Q fever adalah bakteri Coxiella burnetii (C.burnetii). Gejala klinis Q fever pada manusia yang tampak adalah demam seperti gejala influenza dan seringkali diikuti dengan radang paru. Penyakit Q fever seringkali bersifat menahun dan menimbulkan kondisi yang fatal yaitu mengakibatkan kegagalan fungsi hati, radang tulang, radang otak, gangguan pada pembuluh darah dan yang sering terjadi adalah peradangan jantung (endocarditis) yang berakibat fatal (Rice dan Madico 2005).
Negara Amerika bahkan menempatkan C.burnetii sebagai salah satu mikroorganisme yang berpotensi sebagai senjata biologi (CDC 2003). Laporan APEC (2005) menyatakan adanya 13 penderita Q fever pada manusia di Colorado. Hal ini lebih menegaskan lagi bahwa Q fever masih merupakan masalah di benua Amerika.
Epidemiologi Q Fever
Penelitian tentang Q fever di beberapa negara sudah demikian maju, bahkan sekuensing genom dari C. burnetii secara lengkap sudah dilakukan (Seshadri et al. 2003). Hal ini mengingat C. burnetii mempunyai potensi untuk dipakai sebagai senjata biologis. Laporan epidemiologi dari banyak negara menyebutkan bahwa orang yang sering kontak langsung dengan ternak, seperti peternak, pekerja rumah potong, masyarakat yang tinggal di daerah kumuh (urban area) berpeluang besar terserang Q fever. Indonesia dengan jumlah penduduk yang sebagian besar adalah petani yang tidak terlepas dari hewan ternak serta banyaknya lokasi kumuh di perkotaan sangat rentan terhadap infeksi Q fever.
Penelitian terhadap penyebab Q fever di Indonesia sampai saat ini belum pernah dilaporkan. Hal ini bukanlah karena tidak ada kasus Q fever, tetapi lebih disebabkan oleh gejala klinis bentuk akut infeksi Q fever yang tidak begitu menciri, seperti terjadinya pneumonia, keguguran ataupun tingginya kasus hepatitis dan endokarditis. Temuan kasus klinik belum pernah didiagnosa kearah adanya Q fever, sehingga kurang menjadi perhatian oleh pemerintah dan masyarakat seperti halnya infeksi akut avian influenza (AI) ataupun Severe Acute Respiratory Syndrome (SARS). Padahal dampak jangka panjangnya sangat membahayakan dan fatal bagi manusia.
Di sisi lain Indonesia merupakan pengimpor ternak terutama sapi baik sapi bakalan maupun daging beku dari Amerika, Australia, New Zealand dan beberapa negara lain. Pada tahun 2005 Indonesia telah mengimpor sapi sebanyak 700.000 ekor dari Amerika dan Australia (Raswa 2005). Selain itu era globalisasi akan meningkatkan arus lalu lintas perdagangan ternak dan juga mobilitas manusia, yang juga berdampak terhadap cepatnya penyebaran penyakit khususnya zoonosa seperti Q fever ataupun yang lainnya.
Penentuan diagnosis yang cepat dan akurat terhadap Q fever merupakan satu keniscayaan yang sampai saat ini terus dikembangkan di negara-negara maju sebagai upaya pencegahan dan terapi yang tepat dan cepat. Tujuan penelitian ini adalah mengkaji penyebab Q fever pada ruminansia; sapi, domba dan kambing menggunakan teknik nested-polymerase chain reaction (nested-PCR).
Q fever Pada Ruminansia
Hasil kajian diperoleh bahwa dari 410 total sampel ruminansia, 12 ekor sapi Brahman cross dan 6 ekor domba yang berasal dari Bogor, serta 3 ekor sapi Bali yang berada di Bali menunjukkan hasil positif. Sampel dari Kambing semuanya menunjukkan hasil negatif dengan nested-PCR. Sapi Brahman cross adalah jenis sapi impor yang berasal dari Amerika dan Australia. Negara-negara tersebut sampai saat ini masih belum terlepas dari masalah kasus Q fever (CDC 2003).
Hasil pemeriksaan terhadap Sapi Bali
Dari 70 ekor sapi Bali yang diperiksa ternyata 3 ekor positif terhadap adanya C. burnetii. Sapi Bali yang diperiksa berasal dari kabupaten Karangasem yang merupakan daerah dengan populasi Sapi Bali terbesar di provinsi Bali yaitu 129.688 ekor. Sapi-sapi tersebut umumnya sebagian besar dikirim keluar daerah bahkan diantar pulaukan, hanya sebagian kecil yang dikonsumsi mengingat sebagian besar masyarakat Bali beragama Hindu tidak mengkonsumsi daging sapi.
Sapi Bali merupakan plasma nutfah yang dijaga kemurnian genetiknya dengan tidak memasukkan jenis atau strain sapi dari luar Bali. Oleh karena itu, dengan ditemukannya C. burnetii pada sapi Bali tersebut, merupakan suatu hal yang menarik untuk diteliti lebih lanjut, mengingat penellitian tentang Q fever pada sapi Bali yang ada di Bali baru pertama kali dilakukan maka hampir tidak ada data penunjang untuk dapat mengetahui bagaimana C. burnetii dapat menginfeksi sapi Bali. Hal ini seperti yang diteliti Ejercito et al. (1993) tentang prevalensi C. burnetii pada ruminansia liar yaitu sebesar 69 % pada rusa liar di habitat aslinya yang terisolasi. Bagaimana hal tersebut bisa terjadi juga belum dapat dijelaskan, mengingat data penunjang yang sangat minim. Kemungkinan adalah melalui caplak dan kutu yang berpindah, hal ini masih memerlukan penelitian lebih lanjut.
Adanya hasil uji PCR positif terhadap C. burnetii sebagai penyebab Q fever pada ruminansia di wilayah Indonesia merupakan suatu peringatan untuk mulai mempertimbangkan kembali tentang kebijakan impor sapi maupun daging sapi dari luar negeri secara khusus. Tindakan uji penapisan terhadap Q fever pada ternak ruminansia yang diimpor dari luar negeri untuk menghindari dan mencegah penyebaran Q fever sudah sepatutnya mulai ditegakkan. Hal ini mengingat banyaknya vektor yang bisa menyebarkan Q fever dan daya tahan bakteri C. burnetii yang sangat tinggi di alam sehingga upaya pemberantasan menjadi sangat sulit dilakukan.
Berdasarkan hasil pemeriksaan dengan menggunakan metode nested-PCR maka telah dapat ditemukan adanya infeksi C. burnetii di Indonesia, khususnya pada sapi Brahman cross 6.86 %, sapi Bali 4.29 %, dan domba 5.71 %, sedangkan pada kambing dari Bali tidak ditemukan adanya infeksi C. Burnetii.
Saran
Perlu dilakukan penelitian yang lebih mendalam tentang Q fever meliputi pemetaan wilayah, uji serologis maupun penelitian tentang variasi genetik C. burnetii sehingga nantinya dapat diupayakan pembuatan imunoreagen diagnostik untuk penanganan yang tepat melalui diagnosa cepat dan akurat kasus Q fever pada hewan atau bahkan pada manusia.
Agus Setiyono, Staf Bagian Patologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor, Bogor, Indonesia
POTENSI DAN KERAGAMAN SUMBERDAYA GENETIK
SAPI BALI
EKO HANDIWIRAWAN1 dan SUBANDRIYO2
1Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan, Jl. Raya Pajajaran Kav E-59, Bogor 16151
2Balai Penelitian Ternak, PO Box 221, Bogor 16002
ABSTRAK
Sapi Bali merupakan sapi asli Indonesia yang cukup penting karena terdapat dalam jumlah cukup besar dengan wilayah penyebarannya yang luas di Indonesia. Semakin tingginya impor daging dan ternak sapi untuk memenuhi kebutuhan dalam negeri mestinya dapat menjadi pendorong bagi pihak-pihak yang terkait untuk memperbaiki produktivitas sapi dalam negeri dengan mengelola sapi asli Indonesia sebaik-baiknya, termasuk sapi Bali. Beberapa kelebihan dimiliki sapi Bali terutama kemampuan adaptasinya dalam lingkungan dengan ketersediaan pakan berkualitas rendah dan fertilitasnya yang sangat baik. Kebijakan pemerintah untuk menetapkan Propinsi Bali sebagai daerah yang diproteksi bagi masuknya sapi bangsa lain untuk pelestarian sapi Bali sangat beralasan mengingat Indonesia merupakan pusat gen sapi Bali dan tempat pertama kali domestikasi sapi tersebut. Upaya perbaikan mutu genetik sapi Bali yang saat ini tengah dilakukan di wilayah peternakan murni (Propinsi Bali) melalui P3 Bali melalui seleksi dan uji keturunan berhasil mendapatkan sapi dengan nilai pemuliaan dugaan yang lebih baik. Pejantan elit yang dihasilkan melalui program tersebut diharapkan dapat memperbaiki sapi Bali secara keseluruhan melalui program IB. Perbaikan mutu genetik melalui persilangan dengan bangsa sapi Bos taurus dan Bos indicus yang terjadi di kantong-kantong sumber bibit mampu menghasilkan sapi hasil persilangan yang memiliki produktivitas cukup baik untuk final stock. Terdapat kecenderungan untuk terus meningkatkan komposisi genetik sapi Bos taurus melalui program IB di peternakan rakyat. Evaluasi mungkin perlu dilakukan untuk menentukan
komposisi genetik sapi persilangan yang ideal agar dapat berproduksi optimal sesuai dengan kondisi lingkungan setempat.
PENDAHULUAN
Di antara berbagai bangsa sapi yang ada di Indonesia, sapi Bali merupakan salah satu sapi asli Indonesia yang cukup penting dan terdapat dalam jumlah yang cukup besar. Populasi sapi Bali di Indonesia pernah dicatat dua kali yaitu pada tahun 1984 dan 1988, pencatatan jumlah sapi Bali setelah itu tidak pernah dilakukan lagi, sehingga jumlahnya saat ini tidak diketahui dengan pasti. Pada tahun 1988 jumlah sapi Bali tercatat 2.632.125 ekor yang berarti sekitar 26,9% dari total sapi potong di Indonesia. Dibandingkan sapi asli atau sapi lokal lainnya di Indonesia (sapi Ongole, PO dan Madura), persentase sapi Bali tersebut adalah yang tertinggi (DITJEN BINA PRODUKSI PETERNAKAN, 2002). Penyebaran sapi Bali saat ini hampir meliputi seluruh wilayah Indonesia, kecuali Propinsi DKI Jakarta. Empat propinsi yang memiliki jumlah sapi Bali terbesar di Indonesia adalah Propinsi Sulawesi Selatan, NTB, Bali dan NTT. Mengingat jumlahnya yang cukup besar dan penyebarannya yang cukup luas maka sapi Bali merupakan bangsa ternak sapi yang cukup penting dalam penyediaan daging nasional. Pada tahun 2002, produksi daging nasional dari ternak sapi mencapai lebih dari 320 ribu ton, yaitu sekitar 20,5% dari total produksi daging nasional dari beberapa komoditas ternak, dan menempati peringkat kedua setelah produksi daging ayam potong (DITJEN BINA PRODUKSI PETERNAKAN, 2002). Pada berbagai lingkungan pemeliharaan di Indonesia, sapi Bali memperlihatkan kemampuannya untuk berkembang biak dengan baik yang disebabkan beberapa keunggulan yang dimiliki sapi Bali. Keunggulan sapi Bali dibandingkan sapi lain yaitu memiliki daya adaptasi sangat tinggi terhadap lingkungan yang kurang baik (MASUDANA, 1990), seperti dapat memanfaatkan pakan dengan kualitas rendah (SASTRADIPRADJA, 1990), mempunyai fertilitas dan conception rate yang sangat baik (OKA dan DARMADJA, 1996), persentase karkas yang tinggi yaitu 52-57,7% (PAYNE dan ROLLINSON, 1973), memiliki daging berkualitas baik dengan kadar lemak rendah (kurang lebih 4%) (PAYNE dan HODGES, 1997) dan tahan terhadap parasit internal dan eksternal (NATIONAL RESEARCH COUNCIL, 1983). Dengan berbagai keunggulan yang dimiliki tersebut dan mengingat Indonesia merupakan pusat sapi Bali di dunia maka sapi Bali merupakan aset nasional yang perlu dilestarikan. Pemerintah telah sejak lama memberikan perhatian yang cukup besar bagi pelestarian plasma nutfah ini dengan menetapkan program nasional pemuliaan untuk sapi Bali. Program nasional tersebut meliputi program pemurnian dan peningkatan mutu genetik sapi Bali. Program pemurnian sapi Bali dilaksanakan dengan penetapan wilayah peternakan murni sapi Bali yang meliputi Pulau Bali, Pulau Sumbawa di Propinsi Nusa Tenggara Barat (NTB), Pulau Flores di Propinsi Nusa Tenggara Timur (NTT) dan Kabupaten Bone di Propinsi Sulawesi Selatan (PANE, 1991) yang sekaligus wilayah tersebut ditetapkan sebagai sumber bibit sapi Bali secara nasional (SOEHADJi, 1990). Di luar wilayah tersebut, terbuka untuk persilangan dan perbaikan mutu genetik. Namun dalam perkembangannya untuk meningkatkan mutu genetik sapi Bali di beberapa wilayah tersebut, peternak menghendaki adanya persilangan dengan bangsa sapi lain (Bos taurus atau Bos indicus) sehingga PANE (1991) mengemukakan bahwa hanya sapi Bali yang terdapat di Bali yang masih murni.
ASAL-USUL DAN PENYEBARAN SAPI BALI
Sapi Bali (Bibos sondaicus) yang ada saat ini diduga berasal dari hasil domestikasi banteng liar (Bibos banteng). Menurut ROLLINSON (1984) proses domestikasi sapi Bali itu terjadi sebelum 3.500 SM di Indonesia atau Indochina. Banteng liar saat ini bisa ditemukan di Jawa bagian Barat dan bagian Timur, di Pulau Kalimantan, serta ditemukan juga di Malaysia (PAYNE dan ROLLINSON, 1973). HARDJOSUBROTO dan ASTUTI (1993) mengemukakan bahwa di Indonesia saat ini, banteng liar hanya terdapat di hutan lindung Baluran, Jawa Timur dan Ujung Kulon, Jawa Barat, serta di beberapa kebun binatang. Adanya banteng liar ini memberikan peluang Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004 52 untuk perbaikan mutu sapi Bali atau untuk persilangan dengan jenis sapi lain (NATIONAL RESEARCH COUNCIL, 1983).
Tempat dimulainya domestikasi sapi Bali masih terdapat perbedaan pendapat, dimana MEIJER (1962) berpendapat proses domestikasi terjadi di Jawa, namun PAYNE dan ROLLINSON (1973) menduga agaknya asal mula sapi Bali adalah dari Pulau Bali mengingat tempat ini merupakan pusat distribusi sapi Bali di Indonesia. NOZAWA (1979) menduga gen asli sapi Bali berasal dari Pulau Bali yang kemudian menyebar luas ke daerah Asia Tenggara, dengan kata lain bahwa pusat gen sapi Bali adalah di Pulau Bali, di samping pusat gen sapi zebu di India dan pusat gen primigenius di Eropa. Penyebaran sapi Bali di Indonesia dimulai pada tahun 1890 dengan adanya pengiriman ke Sulawesi, pengiriman selanjutnya dilakukan pada tahun 1920 dan 1927 (HERWEIJER, 1950). Kemudian pada sekitar tahun 1947 dilakukan pengiriman besar-besaran sapi Bali oleh pemerintah Belanda ke Sulawesi Selatan yang langsung didistribusikan kepada petani (PANE, 1991). Sejak saat itu, populasi sapi Bali berkembang dengan cepat sehingga sampai saat ini Propinsi Sulawesi Selatan menjadi propinsi yang memiliki sapi Bali dengan jumlah terbesar di Indonesia. Untuk penyebaran sapi Bali ke Lombok mulai dilakukan pada abad ke-19 yang dibawa oleh raja-raja pada zaman itu (HARDJOSUBROTO dan ASTUTI, 1993), dan sampai ke Pulau Timor antara tahun 1912 dan 1920 (HERWEIJER, 1950). Penyebaran sapi Bali ke banyak wilayah di Indonesia kemudian dilakukan sejak tahun 1962 (HARDJOSUBROTO dan ASTUTI, 1993) dan saat ini telah menyebar hampir di seluruh wilayah Indonesia. Tidak hanya di wilayah Indonesia, sapi Bali juga telah disebarkan ke berbagai negara. Tercatat sapi Bali telah diintroduksikan ke Semenanjung Cobourg di Australia Utara di antara tahun 1827 dan 1849. Pernah juga dilakukan ekspor secara reguler sapi Bali kastrasi ke Hongkong untuk dipotong. Selain itu, pada masa lalu, sapi Bali juga pernah dikirim ke Philipina, Malaysia dan Hawai (PAYNE dan ROLLINSON, 1973), telah juga dikirimkan ke Texas, USA dan New South Wales, Australia sebagai ternak percobaan (NATIONAL RESEARCH COUNCIL, 1983).
Sejak berjangkitnya penyakit Jembrana tahun 1964 hingga kini, Bali tidak mengeluarkan sapi bibit (terkecuali pejantan IB) dan perannya diambil alih oleh Propinsi NTT, NTB dan Sulawesi Selatan (PANE, 1991). Ditinjau dari sistematika ternak, hubungannya dengan sapi lain dikemukakan HARDJOSUBROTO (1994) bahwa sapi Bali satu famili dengan sapi lain, yaitu famili bovidae, genus bos dan subgenus bibovine. Sapi-sapi yang termasuk ke dalam subgenus bibovine adalah Bibos gaurus, Bibos frontalis dan Bibos sondaicus. Diketahui bahwa perkawinan antara sapi Bali dengan sapi lain yang berbeda subgenus tersebut (Bos taurus dan Bos indicus) menghasilkan anak jantan yang steril. Beberapa kemungkinan penyebabnya adalah keturunan F1 jantan mengalami gangguan synapsis kromosom selama proses meiosis yang mengurangi daya hidup sel germinal dan banyak hambatan fisiologis yang mempengaruhi perkembangan sel germinal (ELDRIDGE, 1985) serta tidak sempurnanya pembelahan reduksi dalam proses spermatogenesis (HARDJOSUBROTO, 1994).
POTENSI GENETIK SAPI BALI
Produktivitas
Banyak laporan yang telah mengemukakan hasil penelitian mengenai kemampuan produksi sapi Bali. Kemampuan produksi sapi Bali dapat dilihat dari beberapa indikator sifat-sifat produksi seperti bobot lahir, bobot sapih, bobot dewasa, laju pertambahan bobot badan, sifatsifat karkas (persentase karkas dan kualitas karkas), dan sebagainya, maupun sifat reproduksi seperti dewasa kelamin, umur pubertas, jarak beranak (calving interval), persentase beranak, dan sebagainya. Beberapa sifat produksi dan reproduksi tersebut merupakan sifat penting/ekonomis yang dapat dipergunakan sebagai indikator seleksi.
Dewasa sapi Bali induk di Propinsi Bali dan NTB terlihat lebih tinggi dibandingkan yang berada di Propinsi NTT dan Sulawesi Selatan. Bobot badan tersebut tidak jauh berbeda dari yang dilaporkan Pane (1991) bahwa sapi Bali betina dewasa mempunyai bobot badan antara 224-300 kg dengan tinggi sekitar 1,05-1,14 m, sedangkan bobot badan sapi Bali betina terbaik pada pameran ternak tahun 1991 mencapai 300-489 kg dengan tinggi sekitar 1,21-1,27 m (HARDJOSUBROTO, 1994). Sementara itu, sapi Bali jantan dewasa mempunyai bobot antara 337-494 kg dengan tinggi sekitar 1,22-1,30 m PANE (1991), sedangkan bobot badan sapi Bali terbaik pada pameran ternak tahun 1991 mencapai 450-647 kg dengan tinggi sekitar 1,25-1,44 m (HARDJOSUBROTO, 1994).
Dari beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa sapi Bali memberikan respon positif terhadap perbaikan pakan dengan meningkatnya laju pertambahan bobot badan. Rataan laju pertambahan bobot badan (PBB) sapi Bali yang diberi rumput lapangan tanpa diberi pakan tambahan adalah 175,75 g/ekor/hari, namun PBB harian meningkat jika diberi pakan tambahan konsentrat 1,8% hingga mencapai 313,88 g/ekor/hari (AMRIL, 1990). SOEMARMI et al. (1985) melaporkan laju PBB sapi Bali mencapai 690 dan 820 g/ekor/hari berturutturut yang diberi pakan rumput dan pucuk tebu ditambah konsentrat 1%.Pubertas sapi Bali dicapai pada kisaran umur 20–24 bulan untuk sapi betina sedangkan pada yang jantan dicapai pada umur 24–28 bulan (Tabel 2). Beberapa peneliti telah melaporkan bahwa sapi Bali mempunyai tingkat kesuburan yang sangat baik, dan walaupun dalam kondisi lingkungan yang kurang baik sapi Bali masih mampu mempertahankan sifat ini. tidak jelas namun terdapat bulan-bulan dimana banyak terjadi perkawinan. PANE (1991) melaporkan bahwa terlihat terdapat kenaikan perkawinan pada bulan Agustus sampai Januari dan tertinggi pada bulan Oktober dan Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004 54 Nopember, sementara itu bulan Pebruari sampai dengan Juni merupakan bulan-bulan dengan perkawinan lebih rendah dan bulan dimana perkawinan paling rendah yaitu pada bulan Mei. Persentase karkas sapi Bali cukup tinggi yang berkisar antara 52–57,7% (Tabel 3), lebih baik dibandingkan sapi Ongole dan sapi Madura yang dilaporkan MORAN (1979) berturut-turut sebesar 51,9 dan 52,5%. Hasil penelitian ARKA (1984) menunjukkan bahwa kandungan lemak daging sapi Bali cukup rendah dan tanpa marbling, yang merupakan salah satu kelebihan yang dimiliki daging sapi Bali.
Beberapa kelemahan sapi Bali
Sebagai sapi asli Indonesia, sapi Bali memiliki kemampuan adaptasi yang tinggi terhadap lingkungan yang kurang baik, namun demikian sapi Bali ternyata memiliki kerentanan yang sangat tinggi terhadap beberapa jenis penyakit. Sapi Bali sangat peka terhadap penyakit Jembrana/Ramadewa dan Malignant Catarrhal Fever (MCF). Penyakit Jembrana hanya menyerang sapi Bali, selain pernah terjadi di Propinsi Bali, pernah juga terjadi di Propinsi Lampung, Sumatera Selatan (disebut penyakit Ramadewa) dan Jawa Timut (disebut Penyakit Banyuwangi). Tingkat insidens penyakit Jembrana per tahun dilaporkan PERANGINANGIN (1990) sebesar 0,55% dengan persentase kematian dari hewan yang terserang mencapai 11,18%. Sapi Bali juga sangat rentan dengan penyakit MCF, kematian dapat mencapai 100% dari ternak yang sakit. Sapi Madura dan kerbau adalah jenis ternak berikutnya yang juga rentan, sementara itu sapi keturunan Bos indicus dan Bos taurus relatif tahan terhadap penyakit tersebut. Kambing dan domba diketahui merupakan ternak yang sering menyimpan virus MCF dalam jangka waktu lama tanpa menjadi sakit (reservoir) setelah terinfeksi. Sering didapati, di daerah-daerah dengan populasi kambing dan domba yang tinggi, kejadian serangan MCF pada sapi Bali menjadi tinggi. Oleh karena itu, daerah pengembangan sapi Bali menjadi agak terbatas dan harus dipilih daerah-daerah yang mempunyai populasi kambing dan domba yang rendah. Berbeda dengan daging sapi Eropa, daging sapi Bali mempunyai kandungan lemak yang rendah dan tanpa marbling. Aspek ini ditambah dengan tekstur yang alot dan warna yang gelap menjadi kelemahan jika daging sapi Bali dipergunakan sebagai bahan untuk steak, slice-beef, sate dan daging asap, karena kurang disukai oleh konsumen. Namun demikian di sisi lain, perlemakan yang rendah menjadi kelebihan tersendiri bagi konsumen yang melakukan diet ketat untuk lemak hewani. Bagi industri pengolahan daging, warna daging yang gelap dan citarasa yang kuat yang dimiliki sapi Bali sangat diperlukan untuk pembuatan sosis, burger, daging kalengan, dan lain-lain.
PELESTARIAN DAN PEMANFAATAN BERKELANJUTAN
Karakteristik fisik dan keragaman genetik Sapi Bali
Variasi merupakan ciri-ciri umum yang terdapat di dalam suatu populasi. Keragaman terjadi tidak hanya antar bangsa tetapi juga di dalam satu bangsa yang sama, antar populasi maupun di dalam populasi, di antara individu tersebut. Keragaman pada sapi Bali dapat dilihat dari ciri-ciri fenotipe yang dapat diamati atau terlihat secara langsung, seperti tinggi, berat, tekstur dan panjang rambut, warna dan pola warna tubuh, perkembangan tanduk, dan sebagainya. Polimorfisme biokimia pada sapi juga merupakan keragaman yang dapat dilihat dengan adanya variasi di dalam protein plasma atau serum darah (misalnya Albumin, Alkaline Phosphatase, Transferrin, dan lain-lain), sel darah merah (Acid Phosphatase, Haemoglobin beta, Peptidase B, dan sebagainya), sel darah putih (Alkaline ribonuclease, Leucocytic protein 2, Phosphoglucomutase, dan Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004 55 sebagainya) dan susu (Casein beta, Casein kappa, Lactoglobulin beta, dan sebagainya). Sekuen DNA juga mempunyai keragaman yang dapat diamati dengan menggunakan beberapa macam cara, seperti RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism), RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA), SSCP (Single-Strand Conformational Polymorphism), AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism), dan lain-lain. Sapi Bali mempunyai ciri-ciri fisik yang seragam, dan hanya mengalami perubahan kecil dibandingkan dengan leluhur liarnya (banteng). Warna sapi betina dan anak atau muda biasanya coklat muda dengan garis hitam tipis terdapat di sepanjang tengah punggung. Warna sapi jantan adalah coklat ketika muda tetapi kemudian warna ini berubah agak gelap pada umur 12-18 bulan sampai mendekati hitam pada saat dewasa, kecuali sapi jantan yang dikastrasi akan tetap berwarna coklat. Pada kedua jenis kelamin terdapat warna putih pada bagian belakang paha (pantat), bagian bawah (perut), keempat kaki bawah (white stocking) sampai di atas kuku, bagian dalam telinga, dan pada pinggiran bibir atas (PAYNE dan ROLLINSON, 1973; NATIONAL RESEARCH COUNCIL, 1983; HARDJOSUBROTO dan ASTUTI, 1993). Disamping pola warna yang umum dan standar, pada sapi Bali juga ditemukan beberapa pola warna yang menyimpang seperti dikemukakan HARDJOSUBROTO dan ASTUTIm (1993), yaitu:
1.
Sapi injin adalah sapi Bali yang warna bulu tubuhnya hitam sejak kecil, warna bulu telinga bagian dalam juga hitam, pada yang jantan sekalipun dikebiri tidak terjadi perubahan warna;
2.
Sapi mores adalah sapi Bali yang semestinya pada bagian bawah tubuh berwarna putih tetapi ada warna hitam atau merah pada bagian bawah tersebut;
3.
Sapi tutul adalah sapi Bali yang bertutultutul putih pada bagian tubuhnya;
4.
Sapi bang adalah sapi Bali yang kaos putih pada kakinya berwarna merah;
5.
Sapi panjut adalah sapi Bali yang ujung ekornya berwarna putih;
6.
Sapi cundang adalah sapi Bali yang dahinya berwarna putih.
Selain itu, menurut MASUDANA (1990) ada sapi lembu, yaitu sapi yang berwarna putih albino.
Dari 300 sampel pengamatan sapi Bali di Propinsi Bali, HANDIWIRAWAN (2003) mendapatkan sapi Bali yang memiliki warna yang menyimpang dari normal mencapai 17% dan yang terbanyak adalah warna kaos kaki putih tercampur warna merah bata/coklat/hitam atau bagian kaki ini berwarna merah bata/ coklat/hitam. Ditemukan juga sapi Bali yang berwarna tutul dan injin masing-masing sebanyak 0,6 dan 0,3%. Sapi Bali jantan maupun betina mempunyai tanduk, yang berbeda dalam ukuran dan bentuknya dan ada beberapa variasi tipe tanduk pada kedua jenis kelamin tersebut (PAYNE dan ROLLINSON, 1973). Panjang tanduk sapi jantan biasanya 20 sampai 25 cm, bentuk tanduk yang ideal pada sapi jantan disebut bentuk tanduk silak conglok yaitu jalannya pertumbuhan tanduk mula-mula dari dasar sedikit keluar (tumbuh ke arah samping), lalu membengkok ke atas dan kemudian pada ujungnya membengkok sedikit ke arah luar. Pada yang betina, bentuk tanduk yang ideal disebut manggul gangsa yaitu jalannya pertumbuhan tanduk satu garis dengan dahi arah ke atas dan pada ujungnya sedikit mengarah ke belakang dan kemudian melengkung ke bawah lagi mengarah ke kepala (ke dalam). Sapi Bali yang tidak bertanduk tidak pernah ditemukan (PAYNE dan ROLLINSON, 1973; NATIONAL RESEARCH COUNCIL, 1983; HARDJOSUBROTO, 1994). Kepala sapi Bali termasuk panjang tetapi tidak lebar, kedua telinganya tegak dan berukuran sedang (PAYNE dan ROLLINSON, 1973). Terdapat variasi bentuk tanduk pada sapi Bali di Propinsi Bali. Hasil penelitian HANDIWIRAWAN (2003) mendapatkan bahwa pada sapi Bali jantan terdapat 7 macam bentuk tanduk sedangkan pada yang betina diperoleh 12 macam bentuk tanduk. Bentuk tanduk yang umum untuk sapi Bali jantan (seperti didefinisikan PAYNE dan ROLLINSON, 1973; NATIONAL RESEARCH COUNCIL, 1983; HARDJOSUBROTO, 1994) ternyata bukan merupakan bentuk yang umum dimiliki sapi Bali jantan yang teramati. Bentuk tanduk ini hanya dimiliki oleh 6,5% dari sapi Bali jantan yang diamati. Sapi Bali jantan pada umumnya memiliki bentuk tanduk ke samping kemudian ke atas atau ke samping-ke atas kemudian ke belakang, dan proporsi sapi yang bertanduk demikian adalah sebesar 74,5% dari keseluruhan sapi jantan yang diamati. Bentuk umum tanduk sapi Bali betina sesuai dengan Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004 56 bentuk normal yang didefinisikan oleh PAYNE dan ROLLINSON (1973), NATIONAL RESEARCH COUNCIL (1983) dan HARDJOSUBROTO (1994), yaitu mencapai 31,9%. Ditemukan juga bentuk tanduk yang sedikit berbeda dengan bentuk tanduk yang normal dalam jumlah cukup besar (29,3%), yaitu mengarah ke atas dan kemudian ke belakang. Jenis-jenis protein di dalam darah maupun susu dapat menunjukkan polimorfisme dengan menggunakan prosedur elektroforesis, yang merupakan cerminan adanya perbedaan genetis. NAMIKAWA et al. (1982) melaporkan adanya keragaman pada sapi Bali dari hasil pengujian 15 lokus enzim dan protein darah. Pada protein susu juga ditemukan keragaman yaitu untuk protein susu αs1, β dan κ-casein demikian pula untuk β-Lactoglobulin,
sementara itu α-Lactalbumin hanya mempunyai satu macam alel (BELL et al., 1981a; BELL et al., 1981b). DNA mikrosatelit merupakan salah satu penciri genetik DNA yang mempunyai polimorfisme tinggi. WINAYA (2000) yang melakukan penelitian pada 16 lokus DNA mikrosatelit pada sapi Bali dan menemukan keragaman pada sebagian besar lokus DNA mikrosatelit tersebut. Sementara itu, lokus DNA mikrosatelit HEL9 pada sapi Bali adalah monomorfik, sedangkan pada bangsa sapi lain (Madura, PO dan Brangus) adalah polimorfik.
Upaya pelestarian sapi Bali
Perhatian terhadap upaya perbaikan mutu genetik sapi Bali telah dimulai sejak lama. NATIONAL RESEARCH COUNCIL (1983) mencatat bahwa sejak tahun 1913 pemerintah telah menjalankan ketentuan (hukum) yang melarang persilangan pada sapi Bali untuk mempertahankan kemurnian bangsa sapi ini di Bali dan Pulau Sumbawa. Sementara itu, sejak tahun 1942 telah mulai dilaksanakan program seleksi sapi Bali yang baik. Program ini kemudian diubah dan diperbaiki pada tahun 1949, dimana pemilik sapi jantan yang terpilih baik mendapat sejumlah subsidi uang setiap tahun sebagai insentif agar dapat mempertahankan dan terus memperbaiki kualitas sapi miliknya (PAYNE dan ROLLINSON, 1973). Perhatian pemerintah yang lebih besar terhadap upaya pengembangbiakan ternak di Indonesia, selanjutnya diwujudkan dengan dikeluarkannya Undang Undang No. 6 tahun 1967 yang merupakan landasan bagi upaya pengembangbiakan ternak untuk mempertahankan dan meningkatkan mutu bangsa ternak di Indonesia melalui upaya pemurnian atau melalui persilangan antar bangsa ternak (DJARSANTO, 1997). Khusus untuk sapi Bali, telah ditetapkan program nasional yang meliputi program pemurnian dan peningkatan mutu genetik. Sebagai wilayah peternakan murni sapi Bali ditetapkan Pulau Bali, NTB, NTT dan Sulawesi Selatan. Dimulai pada tahun 1976, di Pulau Bali telah dilaksanakan program pemuliaan sapi Bali dengan melakukan seleksi dalam bangsa, untuk memperoleh bibit sapi Bali yang baik mutunya melalui Proyek Pengembangan dan Pembibitan Sapi Bali (P3Bali) (SOEHADJI, 1990). Sementara itu, persilangan hanya dapat dilakukan di luar wilayah peternakan murni. Dalam perkembangannya di wilayah peternakan murni (sumber bibit) telah terjadi pencemaran genetik sapi Bali dengan bangsa sapi lain (Bos taurus dan zebu), kecuali sapi Bali yang ada di Pulau Bali. Sehubungan dengan itu, daerah di luar Bali yang ditetapkan sebagai daerah pemurnian sapi Bali lebih dipersempit lagi, yaitu Pulau Sumbawa di NTB, Pulau Flores di NTT, Kabupaten Bone di Sulawesi Selatan dan Kabupaten Lampung Selatan di Propinsi Lampung. Walaupun demikian, Pane (1991) mengemukakan bahwa hingga kini hanya sapi Bali yang terdapat di Pulau Bali yang masih dapat dipertanggungjawabkan kemurniannya. Upaya penetapan daerah peternakan murni sekaligus dengan meningkatkan produktivitas sapi Bali melalui kegiatan seleksi secara terencana tentunya akan sangat mendukung program pelestarian plasma nutfah ternak asli tersebut. Pelestarian sapi Bali perlu terus dilakukan dimana kegiatan tersebut harus dipandang sebagai upaya antisipatif penyediaan “bahan baku” bagi perakitan bangsa sapi baru untuk dapat mengantisipasi perubahan selera pasar di masa depan yang tidak mudah untuk diprediksi. Sebagai contoh akhir-akhir ini seiring dengan meningkatnya kesadaran untuk mengkonsumsi pangan sehat dan timbulnya perhatian/pandangan yang negatif terhadap pangan berkolesterol maka terdapat perubahan permintaan pada industri peternakan untuk menghasilkan daging dengan kandungan lemak rendah (lean) dan tentunya dihasilkan dari suatu bangsa ternak tertentu. Melalui program persilangan permintaan pasar tersebut dapat direspon dengan membentuk suatu bangsa baru yang lebih sesuai dengan kondisi lingkungan dan pasar di masa mendatang. Beberapa bangsa sapi terkenal seperti Brangus, Santa Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004 57 Gertrudis, Droughmaster, dan lain-lain merupakan bangsa sapi unggul sebagai hasil persilangan dari beberapa macam bangsa sapi yang masih dipertahankan ada/dilestarikan.
Program pelestarian sapi Bali perlu didukung dengan metode identifikasi kemurnian sapi Bali yang cepat, mudah dan akurat, agar pelestarian sapi Bali pada suatu wilayah tertentu dapat berhasil dilakukan tanpa ada keraguan terhadap kemurniannya. Metode identifikasi kemurnian sapi Bali yang andal juga sangat membantu penentuan pemilihan pejantan sapi Bali sebagai pejantan yang dipergunakan di Balai Inseminasi Buatan sehingga pencemaran genetik pada wilayah yang ditentukan sebagai tempat pelestarian sapi Bali murni dapat dihindari. Serangkaian penelitian telah dilakukan untuk mengidentifikasi penciri genetik sapi Bali yang diharapkan dapat dipergunakan sebagai metode untuk menentukan kemurnian sapi Bali. Tim Peneliti Fapet IPB dan BIB Singosari (2000) telah merintis untuk mulai mencari sifat fisik/fenotip (struktur bulu) maupun dari aspek molekuler (protein darah dan DNA mikrosatelit) yang dapat dipergunakan sebagai penciri bangsa sapi Bali. Walaupun sulit dijustifikasi, terdapat perbedaan struktur bulu rambut sapi Bali dengan struktur bulu bangsa sapi lainnya (Simental Limousin dan Brangus). Namun hasil penelitian ini perlu diuji lagi di lapangan khususnya dalam penurunan alel dari tetua ke progeninya. Hasil pengamatan pada lokus Haemoglobin β menunjukkan bahwa alel haemoglobin βX (Hb βX) adalah khas dan mirip seperti yang dilaporkan Namikawa et al. (1982b) bahwa alel haemoglobin βX (Hb βX) adalah alel yang paling umum ditemukan pada sapi Bali dan pada banteng sebagai leluhur dari sapi Bali. Dari hasil penelitian pada empat bangsa sapi dengan sampel yang terbatas, WINAYA (2000) mengemukakan bahwa lokus DNA mikrosatelit HEL9 pada sapi Bali adalah monomorfik, sedangkan pada bangsa sapi lain (Madura, PO dan Brangus) adalah polimorfik. Hasil penelitian Tim Peneliti Fapet IPB dan BIB Singosari (2000) dengan sampel terbatas pada tiga bangsa sapi lainnya (Simmental, Brangus, dan Limousin) memperkuat hasil penelitian tersebut. Selain itu diperoleh juga hasil bahwa lokus DNA mikrosatelit INRA035 pada seluruh sampel sapi Bali yang diteliti konsisten mempunyai dua alel sehingga kemungkinan dapat dipergunakan sebagai penciri genetik untuk sapi Bali. Handiwirawan (2003) melakukan pengujian lokus DNA mikrosatelit HEL9 dan INRA035 dalam sampel yang lebih besar pada sapi Bali di Propinsi Bali. Hasil identifikasi genotipe sapi Bali dan genotipe banteng sebagai pembanding menunjukkan bahwa alel A dan alel B merupakan alel yang monomorfik pada lokus mikrosatelit INRA035 pada sapi Bali sehingga dapat digunakan sebagai penciri genetik sapi Bali. Alel A pada lokus mikrosatelit HEL9 merupakan alel dengan frekuensi yang sangat tinggi pada sapi Bali (92,9%) yang dapat dipergunakan sebagai penciri genetik pendukung pada sapi Bali karena semua banteng yang diuji juga memiliki alel tersebut. Dari beberapa hasil penelitin tersebut penggunaan lokus mikrosatelit INRA035 sebagai penciri genetik sapi Bali dapat digunakan, namun sebaiknya dikombinasikan dengan pengujian lokus HEL9 dan identifikasi fenotipe (pola warna tubuh, bentuk tanduk dan struktur bulu) agar diperoleh hasil yang lebih akurat.
Perbaikan mutu genetik sapi Bali
Program pemuliaan khusus untuk sapi Bali telah ditetapkan dan dijalankan pemerintah. Pokok-pokok pemuliaan sapi Bali seperti dikemukakan SOEHADJI (1990) adalah meliputi:
1. Menjalankan peternakan murni sapi Bali di Pulau Bali, NTB, Pulau Timor dan beberapa daerah di Sulawesi Selatan sebagai sumber bibit sapi Bali secara nasional,
2. Melakukan uji performans dan uji zuriat di breeding centre P3Bali Pulukan Bali untuk memperoleh pejantan sapi Bali unggul yang digunakan untuk kawin alam atau produksi semen beku,
3. Membentuk populasi dasar sebagai sumber gen yang unggul dan membentuk kelompok sapi Bali betina unggul dan dipelihara di Pusat Pembibitan Sapi Bali di Pulukan, Bali dan Anamina, Dompu-Sumbawa,
4. Melakukan inseminasi buatan berskala nasional untuk mempercepat aliran gen yang unggul dari pejantan sapi Bali unggul. Proyek Pembibitan dan Pengembangan Sapi Bali (P3Bali) dilaksanakan sebagai upaya untuk memperbaiki mutu genetik sapi Bali di Propinsi Bali melalui seleksi, uji performans dan uji keturunan (progeny test).
Dalam kegiatan ini, pejantan elit yang dihasilkan dari uji keturunan akan dipergunakan BIB untuk Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004 58 diambil semennya guna memperbaiki mutu genetik sapi Bali di seluruh Indonesia. Dari kegiatan ini terlihat bahwa performans produksi dan reproduksi sapi Bali di P3Bali dilaporkan lebih baik dibandingkan sapi Bali yang terdapat di Propinsi Bali, NTB, NTT dan Sulsel (PANE, 1990). SUKMASARI (2001) dengan menggunakan metode BLUP (best linear unbiased prediction) mendapatkan hasil bahwa sapi Bali yang dipelihara di breeding center Pulukan mempunyai rataan nilai pemuliaan dugaan lebih tinggi dibandingkan di instalasi populasi dasar (Marga, Baturiti, Selemadeg, Penebel). Namun demikian kecenderungan genetik yang merupakan perubahan rataan nilai pemuliaan dari suatu populasi dalam waktu tertentu untuk bobot sapih dan bobot setahun didapati menurun dengan kemiringan berturut-turut –0,60 dan – 0,30, sedangkan kecenderungan genetik pertambahan bobot badan harian pascasapih meningkat dengan kemiringan 1,74 (analisa data dari 1991-2000). Secara keseluruhan, mulai tahun 1983 sampai 1999 kecenderungan genetik sapi Bali di P3 Bali mengalami fluktuasi dari tahun ke tahun. Dari hasil penelitiannya tersebut, SUKMASARI (2003) juga menyarankan bahwa seleksi agar didasarkan pada nilai pemuliaan agar seleksi dapat dilakukan lebih akurat sehingga kecenderungan genetik sapi Bali di P3 Bali terus meningkat. Di luar wilayah pemurnian (Propinsi Bali) kebijakan pemerintah untuk melakukan persilangan melalui IB dapat dilakukan dengan bangsa sapi lain. Sejak diperkenalkannya teknologi IB, persilangan dengan semen-semen Bos taurus dan Bos indicus banyak dilakukan, termasuk pada sapi Bali di daerah-daerah kantong bibit (NTT, NTB dan Sulsel). Jika dikaitkan dengan kerentanan sapi Bali terhadap penyakit Jembrana dan MCF, program persilangan berdampak positif terhadap kasus serangan penyakit tersebut. Sapi hasil persilangan memiliki ketahanan yang lebih tinggi terhadap penyakit tersebut karena pewarisan gen sapi Bos taurus, dan dengan demikian wilayah pengembangan sapi persilangan ini dapat lebih luas. Di wilayah kantong bibit, berdasarkan pengalamannya peternak memiliki kesukaan pada bangsa-bangsa tertentu dan memilih semen-semen dari bangsa tersebut untuk dipergunakan dalam IB, seperti Simmental, Limousin, Hereford dan Brangus. Tidak jarang anak betina hasil persilangan di-IB dengan bangsa sapi yang sama kembali dan demikian seterusnya sehingga komposisi genetik sapi Bos taurus menjadi terus meningkat. Tindakan yang demikian dipastikan akan menurunkan kemampuan adaptasi sapi hasil persilangan tersebut pada lingkungan yang keras sehingga produktivitasnya menjadi menurun. Sampai saat ini pada wilayah-wilayah tersebut banyak terbentuk keturunan sapi Bali dengan komposisi genetik yang tidak jelas. Evaluasi terhadap persilangan pada sapi Bali nampaknya perlu dilakukan untuk menentukan komposisi genetik sapi persilangan yang sesuai dengan kondisi lingkungan dimana sapi tersebut dikembangkan. Seiring dengan berjalannya Otonomi Daerah maka masingmasing wilayah dengan kondisi lingkungan yang berbeda akan mempunyai program persilangan untuk menghasilkan sapi yang cocok dengan sistem usaha dan kemampuan sumberdaya alamnya.
KESIMPULAN DAN SARAN
Beberapa kelebihan yang dimiliki sapi Bali, seperti mempunyai fertilitas dan persentase karkas yang tinggi, kadar lemak daging yang rendah, dan mampu memanfaatkan pakan berkualitas rendah, serta memberikan respon cukup baik dalam perbaikan pakan, menunjukkan bahwa sapi bali berpotensi dan cocok untuk dikembangkan pada kondisi lapang di Indonesia pada umumnya. Pelestarian sapi Bali sangat penting dilakukan mengingat potensi besar yang dimilikinya untuk dipergunakan sebagai “bahan baku” pembentukan bangsa sapi baru untuk saat ini dan di masa depan dalam mengantisipasi permintaan pasar yang terkadang sukar untuk
diprediksi. Perbaikan mutu genetik melalui seleksi di wilayah peternakan murni dan persilangan dengan Bos taurus di kantongkantong sumber bibit mampu memperlihatkan perbaikan produktivitas. Program persilangan untuk sapi Bali yang saat ini dilakukan perlu dibuat lebih jelas arahnya agar produksinya dapat lebih optimal.
DAFTAR PUSTAKA
AMRIL, M. A., S. RASJID dan S. HASAN. 1990.
Rumput lapangan dan jerami padi amoniasi
urea sebagai sumber hijauan dalam
penggemukan sapi Bali jantan dengan
makanan penguat. Pros. Seminar Nasional
Sapi Bali. 20-22 September 1990. Fakultas
Peternakan Universitas Udayana. Denpasar.
ARKA, I.B. 1984. Pengaruh Penggemukan terhadap
Kualitas Daging dan Karkas pada sapi Bali.
Disertasi. Universitas Pajajaran, Bandung.
Lokakarya Nasional Sapi Potong 2004
59
system saraf
PENDAHULUAN
Nervi cranalis
- Dua belas pasang nervi cranialis (nervi cerebrates) merupakan saraf-saraf yang membersit dari encephalan.
- Sebagai diketahui nervi cranialis umurnya keluar dari otak melalui satu akar (radix).
- Sebelas pasang N. cranialis membersit dari bidang ventral otak sedangkan 1 pasang H trochleoris yang keluar meninggalkan otak di bidang dorsal.
- Nervi cranialis tidak membentuk ptexi seperti yang dikenal pada N. spinalis (plexus brachialis dan plexus lumbosacralis).
- Nervi cranialis pada umumnya tidak membentuk tiga sekawan bersama arteri dan vena. Kecuali nervi vagus dan asesorius daerah pengaruhnya terbatas hanya dikepala.
- Semua syaraf ini
Yang paling kecil saraf IV (throclearis)
Yang paling besar saraf V trigeminus (lembar ketiga)
Yang palinmg panjang nervus vagus (disebut netrvus kembara yang menghasulkan testosterone dll).
Plexus Brachialis
Merupakan anastomose yang intensif dari rami ventroles 3 sampai 4 nervil cervalis terakhir dari 1 sampai 2 nervil thoracales pertama. Dari plexus brachialis rembersit 11 pasang saraf untuk daerah bahu dan kaki mukasebelah distal.
- Saraf untuk daerah bahu :
1. N. Suprascapularis
2. N. subscapularis
Ke 2 saraf ini berunsur somatomotoris dan manginevorsi, otot-otot bahu sebelah lateral (M. supraspinatus dan M. infraspanatus) dan sebelah medial (subscapularis).
- Syaraf untuk dinding bahu :
1. N. thoracalis anterus
2. N. thoracodorsalis
3. N. thocicus lungus
4. N. thoracica lateralis (externus) berasal dari cervicalis VIII dan
thoracalis I II.
Syaraf-syaraf ini menginervasi otot-otot umumnya yaitu : Otot-otot yang berorigo ditubuh dan berisertio dikaki (muka) seperti otot-otot penggantung tubuh dan m. latissimus dorsi serta m. brachiophalicus.
- Saraf untuk kaki muka
1. N. muscullacutareus
Motoris : Otot-otot flexor persendian siku.
Sensible : Kulit daerah antibrachium corpus dan retacurpus sebelah medial.
2. N. axilaris
Motoris : Otot-otot flexor persendian bahu.
Sensorik : Kulit antibrachium sebelah dorsal lateral.
3. N. radialis
Motoris : Otot-otot extensor persendian siku, corpus, jari.
Sensoris : Kulit antibrachium sebelah dorsal lateral (kuda) dan kulit daerah jari sebelah dorsal (pemamah biak).
4. N. ulnaris
Motorik : Otot-otot flexor persendian corpus + jari.
Sensorik : Kulit antibrachium sebelah volar, kulit corpus dan metacarpus sebelah dorsal lateral.
5. N. medianus
Motorik : Otot-otot flexor persendian corpus + jari.
Sensorik : Kulit antibrachium sebelah medal, kulit daerah jari (kuda). Kulit daerah jari sebelah volar (pemamah biak).
Plexus Lumbosacralis
Plexus ini dibentuk oleh rami ventrales dari N. V,VI dan N. Sacrales 1 dan 2. Dari plexus lumbosacrales membersit 5 saraf : n. femoralis abturatorium, gluteus cranalis, gluteus coukalis dan ischiadicu:
- H. femoralis
Motorik : Otot-otot ekstensor persendian lutut.
Sensorik : Kulit cruris bagian dorsal median (N. Saphenus)
- N. Obturatorius
Motoris : Otot-otot adductor kaki belakang.
- N. Gluteus cranalis
Motoris : Otot-otot ekstensor persendian paha.
- N. Gluteus caudalis
Motoris : Otot-otot ekstensor persendian paha.
Sensorik : Kulit daerah panggul + paha sebelah lateral caudal.
- N. Ischiadicus
a. H. Fibialis
Motoris : Otot-otot ekstensor persendian paha (radius muscularis proximale). Otot-otot flexor persendian lutut (radius muscukiri: distal).
Otot-otot ekstensor persendian tarsus.
Otot-otot flexor persendian jari.
Sensibel : Kulit extensor medial (n. cutaneus medialis) Kulit daerah jari sebelah plantar.
b. N. Parpneus
MotoriK : otot-otot flexor persediaan tarsus. Otot-otot ekstonsor persediaan jari.
Sensibel : Kuilit deaerah tarsus + metatarsus sebelah lateral Kulit daerah jari sebelah dorsa.
Aspergilosis & Mikotoksikosis
Apabila terjadi kegagalan pencapaian hasil produksi telur maupun daging yang optimal maka pakan-lah yang sering dianggap sebagai penyebab utamanya. Sebenarnya banyak faktor yang berpengaruh pada usaha peternakan di daerah beriklim tropis seperti di Indonesia, yang notabene beriklim panas (hot climate) dengan kelembaban (Rh) yang tinggi serta mempunyai dua musim. Kondisi tersebut merupakan zona yang cukup ideal bagi pertumbuhan jamur, yang dapat menyerang pada pakan jadi maupun bahan-bahan pakan.
Aspergilosis merupakan penyakit pernafasan yang disebabkan oleh jamur dan tersifat oleh adanya gangguan pernafasan yang berat. Penyakit ini juga dapat menimbulkan lesi pada berbagai organ lainnya, misalnya pada otak dan mata. Istilah Aspergilosis dipakai untuk menunjukkan adanya infeksi Aspergillus sp. pada saluran pernafasan, antara lain Aspergillus flavus, Aspergillus fumigatus dan Aspergillus niger. Penyakit ini juga diserbut brooder pneumonia dan fugal pneumonia
Infeksi yang disebakan oleh jamur pada berbagai organ dapat menimbulkan penyakit yang disebut mikosis. Beberapa jenis jamur juga dapat tumbuh pada pakan dan berbagai bahan baku pakan dan menghasilkan toksin (mikotoksin), yang dapat menimbulkan penyakit yang disebut mikotoksikosis.
Kejadian Penyakit
Aspergilosis dapat menyerang berbagai spesies unggas di dunia. Penyakit ini dapat bersifat
Penyakit ini dapat ditemukan dalam beberapa bentuk, yaitu bentuik pulmonum, sistemik, kulit, mata dan otak. Berbagai bentuk aspergilosis dapat ditemukan secara tunggal ataupun bentuk campuran.( Tabbu. 2000 )
Mycotoxin kadang kala menjadi bahaya laten disetiap farm yang berada di daerah tropis, karena racun ini dapat menyebabkan serangan atau gangguan kesehatan pada ternak yang dapat berujung pada kematian yang dikenal sebagai mycotoxicosis. Kurang baiknya manajemen penyimpanan bahan pakan maupun pakan jadi, menyebabkan terjadinya invasi mycotoxin pada sebuah farm. Sehingga apabila suatu farm telah terinvasi oleh mycotoxin maka jangan diharapkan produksi optimal akan tercapai (Litbang Pertanian. 2001).
Mycotoxin merupakan zat beracun yang dihasilkan dari suatu spesies jamur. Saat ini ada beberapa spesies jamur yang memproduksi mycotoxin seperti Aspergillus sp , Penicilium sp , dan Fusarium sp. Biasanya jamur-jamur tersebut tumbuh pada hasil-hasil pertanian yang tidak mendapat penanganan yang baik pada pasca panen. Untuk wilayah kita komoditi Jagung, gaplek serta dedak merupakan media yang baik untuk pertumbuhan jamur-jamur tersebut. Dan alangkah ironisnya kesemuanya itu merupakan bahan yang dipakai dalam pakan campuran konsentrat (Litbang Pertanian. 2001).
Secara umum mycotoxin yang dihasilkan oleh species Aspergillus yaitu CPA, Aflatoxin B1, B2, G1, G2 , dan Ochratoxin A. Species Penicillum memproduksi Ochratoxin, Patulin dan Citrin. Sedangkan species fusarium memproduksi Fumonisins, Zearalenone, T-2 dan DAS (Devegowda dalam Diaz, 2005).
Sampai saat ini ada beberapa mycotoxin yang sudah teridentifikasi di Indonesia yaitu AFB1, ZEN, DON dan CPA (Litbang Pertanian, 2001) dan dipertegas oleh Devegowda (2005) bahwa hampir 81% sample dari feedmill yang ada terkontaminasi oleh CPA. Keberadaan CPA ini merupakan ancaman bagi saluran pencernaan unggas (Devegowda dalam Diaz, 2005).
Setiap mycotoxin mempunyai efek negatif pada target organ yang berbeda-beda, misalnya Aflatoxin menyebabkan kerusakan pada hati sedangkan Ochratoxin A menyebabkan kerusakan pada ginjal ternak. Secara umum serangan mycotoxin pada ternak unggas mengakibatkan :
- Terjadi immunosuppresion (dikarenakan ada kelainan tymus dan bursa fabricus sebagai pabrik antibody)
- Penurunan Feed Intake
- Produksi telur akan terganggu serta turunnya hatchability
- Pertumbuhan bobot badan (PBB) yang rendah
- FCR tinggi
- Terjadi wet dropping
- Penurunan pigmentasi kulit
- Terjadi kelainan organ dalam seperti gizzard , hati dan ginjal.
- Peningkatan mortality
Menurut BASF, 1998 diantara beberapa akibat diatas, ada satu yang benar-benar harus dicermati yaitu terjadinya imunosuppression. Apabila ini telah terjadi maka dapat diprediksikan bahwa di farm tersebut akan terjadi invasi dari virus/bakteri pathogenic. Dengan terjadinya penurunan daya tahan tubuh (immune), maka ternak tersebut akan lebih mudah terinfeksi virus/bakteri yang gejalanya lebih jelas daripada faktor primernya (mycotoxin)
Masing-masing ternak mempunyai daya tahan yang berbeda-beda terhadap kontaminasi mycotoxin dalam pakan. Dengan kata lain apabila kandungan mycotoxin didalam pakan masih dalam batas ambang aman, maka ternak tersebut masih bisa bertahan, tidak mengalami kematian hanya terganggu proses-proses metabolismenya dan apabila kandungan mycotoxin telah melebihi batas ambang aman maka ternak tersebut mulai menampakkan gejala-gejala mycotoxicosis tersebut diatas.
Menurut BASF, 1998 menyebutkan bahwa ayam broiler mampu mentoleransi aflatoxin sebesar 0.010 ppm (10 ppb) sedangkan ayam layer mampu sampai dengan 0.02 ppm (20 ppb). Dan menurut Romindo, 2004, untuk semua unggas muda masih bisa bertahan terhadap kontaminasi Aflatoxin sampai dengan 0.05 ppm (50 ppb), untuk unggas dewasa sampai dengan 0.10 ppm (100 ppb) (Devegowda dalam Diaz, 2005).
Cara Penularan
Rute penularan paling utama melalui prnafasan, yaitu dengan menghirup spora dalam jumlah banyak. Selain itu penyakit ini dapat ditularkan melalui telur, karena organisme ini dapat tumbuh di bagian dalam dalam dari telur, yang dapat menurunnya daya tetas dan peningkatan kematian embrio (Tabbu.2000). Sehingga dimungkinkan anak ayam yang menetas dan masih hidup, akan mempunyai resiko tinggi terinfeksi aspergillosis dan pencemaran Aspergillus sp. dapat ditemukan didalam setter, hatcher, ruang incubator dan internal duct.
Gejala Klinis
Masa inkubasi Aspergillosis sekitar 4-10 hari dan proses penyakit dapat berlangsung dua sampai beberapa minggu. Ada 2 bentuk pada penyakit ini:
Bentuk Akut
Gejala yang terlihat meliputi kesulitan bernafas (dyspnoea), bernafas melalui mulut, peningkatan frekuensi pernafasan, kehilangan nafsu makan dan kadang dapat terjadsi paralysis (kelumpuhan), kejang-kejang yang disebabkan oleh toksin Aspergillus sp. Jika gangghuan pernafasan hanya di sebabkan oleh Aspergillosis maka tidak akan terdengar suara ngorok, hanya terlihat kesulitan bernafas saja dan bersifat kering. Ayam yang terinfeksi berat biasanya akan mati dalam waktu 2-4 minggu. Mortalitas sekitar 5%-20% tapi juga kadsang-kadang dapat mencapai 50% (Tabbu,.2000).
Bentuk Kronis
Gejala yang terlihat pada bentuk ini meliputi kehilangan nafsu makan, lesu, bernafas melalui mulut, emasiasi, sianosis (kebiruan pada kulit di daerah kepala dan jengger) dan dapat berlanjut dengan kematian. Menurut Tabbu, 2000. lamanya proses penyakit tergantung pada umur dan daya tahan dari ayam. Proses penyakit dapat berlangsung beberapa minggu sampai beberapa bulan. Mortalitas biasanya kurang dari 5%. Pertumbuha ayam tidak seragam oleh karena adanya hambatan pertumbuhan pada ayam akibat infeksi oleh Aspergillus sp.
Perubahan Patologik
Makroskopik
Lesi awal akan terlihat meliputi noduli kaseus kecil berwarna kekuningan dengan diameter 1 mm, yang tersebar secara acak pada jaringan paru. Lesi pada paru biasanya disertai adanya plaque yang berisi eksudart kaseus berwarna kuning yang mengumpul pada daerah kolonin jamur pada kantung udara dengan ukuran 1-2 mm, sehingga akan terlihat adanya penebalan pada kantung udara. Pada kasus yang melanjut, organisme tersebut kerapkali mengalami sporulasi pada permukaan lesi kaseus dan permukaan kantung udara yang menebal, yang ditandai adanya pertumbuhan jamur berwarna kelabu kehijauan. Lesi pada paru dapat juga berbentuk perubahan warna kuning kelabu yang difus tanpa adanya bentukan noduli.
Mikroskopis
Lesi pada paru pada stadium awal Aspergillosis tersifat adanya timbunan limfosit, sejumlah makrofag dan beberapa gian cell, yang bersifat fokal. Pada stadium selanjutnya, maka akan berkembang menjadi nekrosis granuloma, yang terdiri atas daerah nekrosis sentral yang mengandung heterofil dan dikelilingi makrofag, giant cell, limfosit dan sejumlah jaringan ikat. Diketemukannya agen penyebab Aspergillus sp. berupa hiphae yang mrenembus jaringan parenkim maupun intertisium, terutama pada derah jaringan nekrosis.
Diagnosis
Diagnosa dugaan sementara dapat didasarkan atas riwayat kasus, lesi yang spesifik pada ayam yang terinfeksi dan membuktikan adanya hiphae dalam pemeriksaan mikroskopis secara langsung pada jaringan yang dicurugai. Diagnosis akhir didasarkan atas isolasi dan identifikasi jamur di laboratorium mikrobiologi.
Aspergillus adalah suatu cendawan yang reproduksinya secara aseksual dengan memproduksi spora yang disebut conidia. Lingkaran hitam di pusat penjuluran adalah suatu massa conidia, bentukan warna biru adalah hyphae, yang secara normal tumbuh pada media. Pada perbesaran yang lebih tinggi menunjukkan suatu gambaran yang lebih terperinci dan jelas pada conidia.
A. flavus merupakan kapang saprofit. Koloni yang sudah menghasilkan spora berwarna cokelat kehijauan hingga ke hitaman. Miselium yang semula berwarna putih tidak tampak lagi (Dwidjoseputro 1981).
Prinsip Diagnosa secara Mikrobiologi
Diagnopsa Aspergillosis berdasarkan pada koloni cendawan yang tumbuh pada media padat. Pemeriksaan terhadap koloni cendawan dilakukan secara makroskopis untuk melihat bentuk dan warnanya, sedangakan secara mikroskopis untuk mengetahui sifat morfologiknya.
Media dan Pereaksi
· Sabouraud glucose agar atau Sabouraud dektrose agar — sebagai media pertumbuhan.
· Lactophenol cotton blue atau KOH 10%– sebagai deteksi elemen jamur.
Prosedur
Perlakuan Spesimen
Spesimen diambil secara aseptik mungkin dan sesegera dikirim ke laboratorium untuk diperiksa. Terhadap specimen asal dari organ sebaiknya dalam keadaan dingin.untuk specimen lain misalnya pakan atau komponen pakan yang lain, kerokan kulit, disimpan dalam keadaan kering.
Pemeriksaan secara Langsung
· Spesimen dalam jumlah sesedikit mungkin letakkan dalam kaca preparat, lalu beri 1-2 tetes KOH 10% atau Lactophenol cotton blue.
· Tutup dengan cover glass dan hindari adanya gelembung
· Lihat dengan mikroskop
Secara Cultur
· Inokolasikan media agar dalam petridish dengan potongan kecil specimen yang diduga mengandung aspergillus pada bagian tengahnya.
· Jaga kelembaban dengan mensegel cawan Petri dengan selotip.
· Inkubasikan pada suhu 37o C selama lebih kurang 7 hari dengan dialasi dengan kertas saring yang dibasahi air.
· Amati pertumbuhan setiap hari
Pemeriksaan Mikroskopis
· Dengan ujung jarum atau scalpel, ambil potongan koloni yang tumbuh pada media agar tadi, letakkan ditengah kaca preparat
· Beri 1-2 tetes lactophenol cotton blue, lalu tutup dengan cover glass dan hhindari adanya gelembung
· Lihat dengan mikroskop
Penetapan
Secara Cultural
· Pengamatan koloni dilakukan setiap hari, dengan memperhatikan pertumbuhan dan bentuk, warna koloninya
· Aspergillus sp. biasanya aka tumbuh pada hari ke 3-5 atau bias lebih.
Pemeriksaan Langsung
Dengan menggunakan mikroskop, terlihat adanya struktur spora, spongiophore atau conidiophore atau myselium bila memang ada cendawannya,biasanya dalam keadaan pendek atau terpisah.
Pemeriksaan Mikroskopis
Hampir sama dengan pemeriksaan langsunghanya saja struktur spora, spongiophore atau conidiophore atau myselium bila memang ada cendawannya akan terlihat lebih jelas dan biasanya utuh.
Pernyataan Hasil
Aspergillus sp. ditinjau dari segi koloni akan mempunyai sifat :
a. Pertumbuhan lambat
b. Mula-mula berwarna putih
c. Kemudian terlihat perubahan warna mulai dari bagian tengah koloni. Antaralain:
· Aspergillus niger berwarna coklat-hitam dari sporanya dengan tepi koloni berwarna putih.
· Aspergillus fumigatus pada bagian tengahnya akan mengambil warna biru-kehijauan untuk kemudian warna akan lebih gelap.
· Aspergillus flavus akan mengambil warna kuning-kehijauan.
Tindakan Pencegahan agar farm aman dari mycotoxin
Untuk menghindari terjadinya kontaminasi jamur pada bahan pakan dan pakan jadi maka perlu :
1. Memperbaiki manajemen pengadaan bahan baku misalnya selektif dalam memilih bahan baku dengan jalan memperhatikan fisik dari bahan tersebut (keseragaman tekstur, kadar air (max 17%), bau dan warna).
2. Memperbaiki manajemen penyimpanan bahan meliputi dari perbaikan sistem ventilasi gudang, cara penumpukan bahan, pemakaian pallet sebagai alas. Secara umum perbaikan manajemen bertujuan agar sirkulasi udara lancar, menurunkan temperature dan Rh (kelembaban) gudang serta meminimalkan proses respirasi dari bahan-bahan yang disimpan.
3. Pengaturan jadwal pest control (fumigasi) yang teratur, Keterlambatan penjadwalan fumigasi menyebabkan terjadinya infasi dari serangga yang akan merusak biji sehingga memudahkan jamur berkembang pada media biji rusak tersebut.
4. Untuk menjaga kualitas bahan pakan/pakan jadi tetap baik maka perlu dilakukan penambahan mold inhibitor untuk menekan pertumbuhan jamur yang dapat menghasilkan mycotoxin dan selalu menjaga kebersihan tempat pakan.
5. Apabila kondisi lingkungan sedang tidak baik (sulit mendapatkan bahan baku dengan kualitas baik) maka perlu dilakukan penambahan mycotoxin binder pada pakan yang akan diberikan terutama untuk ternak layer yang mempunyai umur hidup yang cukup panjang. Mycotoxin binder merupakan imbuhan pakan yang dapat mengikat mycotoxin didalam saluran pencernaan ayam dan membuangnya melalui feces.
6. Jika menggunakan complete feed (pakan jadi) maka disarankan untuk memilih pabrikan pakan yang telah menggunakan mold inhibitor dan mycotoxin binder untuk menjamin stabilitas dan keamanan penghuni farm.
Referensi
BASF, 1998. Mycotoxin Development and tolerance in Animals. Paper Keeping Current.
Beseke, E.S andA.LRogers (1980). Medical Mycology Manual with Human Mycoses.th edition. Burgess Publishing Company. Minneapolis. Minnesota. Monograph 4
Devegowda,G & T.N.K Murthy in Diaz, D.E., 2005. Mycotoxin: Their effect s in Poultry and Some Practical Solutions. The Mycotoxin Blue Book. Nottingham Univ. Press
Litbang Pertanian, 2001. didalam Jurnal Litbang Pertanian 20(2). Bogor*Romindo, 2004. Mycotoksikosis dan Cara Penanggulangannya. Jakarta
